D.Lgs n. 152
del 11 maggio 1999 - Disposizioni sulla tutela delle acque dall'inquinamento
e recepimento della direttiva 91/271/Cee concernente il trattamento delle
acque reflue urbane e della direttiva 91/676/Cee relativa alla protezione
delle acque dall'inquinamento provocato dai nitrati provenienti da fonti
agricole. (Pubblicato sul Supplemento Ordinario n. 101/L alla
Gazzetta Ufficiale n. 124 del 29 maggio 1999) - (Aggiornato
con le modifiche del D.lgs 18 agosto 2000, n. 258)
ALLEGATO 2:
CRITERI PER LA CLASSIFICAZIONE DEI
CORPI IDRICI A DESTINAZIONE FUNZIONALE
SEZIONE A:
CRITERI GENERALI E METODOLOGIE PER IL RILEVAMENTO DELLE CARATTERISTICHE
QUALITATIVE E PER LA CLASSIFICAZIONE DELLE
ACQUE SUPERFICIALI DESTINATE ALLA PRODUZIONE DI ACQUA POTABILE
I seguenti criteri
si applicano alle acque dolci superficiali
utilizzate o destinate ad essere utilizzate
per la produzione di acqua potabile dopo i trattamenti appropriati.
1) CALCOLO DELLA CONFORMITA'
E CLASSIFICAZIONE
Per la classificazione delle
acque in una delle categorie Al, A2, A3, di cui alla tabella 1/A,
i valori specificati per ciascuna categoria devono essere conformi
nel 95% dei campioni ai valori
limite specificati nelle colonne I e nel 90% ai valori
limite specificati nelle colonne G, quando non
sia indicato il corrispondente valore nella colonna I.
Per il rimanente 5% o il 10% dei campioni che,
secondo i casi, non sono conformi, i parametri non devono discostarsi in
maniera superiore al 50% dal valore dei parametri in questione,
esclusi la temperatura, il pH, l'ossigeno disciolto ed
i parametri microbiologici.
2) CAMPIONAMENTO
2.1) UBICAZIONE DELLE STAZIONI
DI PRELIEVO
Per tutti i laghi naturali
ed artificiali e per tutti i corsi d'acqua naturali ed artificiali
utilizzati o destinati ad essere utilizzati per l'approvvigionamento
idrico potabile - fermo restando quanto previsto
nell'allegato 1 - le stazioni di prelievo dovranno essere ubicate
in prossimita' delle opere di presa esistenti o previste in modo
che i campioni rilevati siano rappresentativi della qualita'
delle acque da utilizzare.
Ulteriori stazioni
di prelievo dovranno essere individuate in punti significativi
del corpo idrico quando cio'
sia richiesto da particolari condizioni locali, tenuto
soprattutto conto di possibili fattori di rischio
d'inquinamento. I prelievi effettuati in tali stazioni
avranno la sola finalita' di approfondire la conoscenza
della qualita' del corpo idrico, per gli opportuni interventi.
2.2) FREQUENZA
MINIMA DEI CAMPIONAMENTI E DELLE ANALISI
DI OGNI PARAMETRO
Frequenza
minima annua dei campionamenti e delle analisi per i corpi idrici da classificare |
GRUPPO
DI PARAMETRI (°) |
I |
II |
III |
12 |
12 |
12 |
|
Frequenza
minima annua dei campionamenti e delle analisi per i corpi idrici già
classificati |
GRUPPO
DI PARAMETRI (°) |
I
(*) |
II |
III
(**) |
8 |
8 |
8 |
|
(°) I parametri dei diversi gruppi
comprendono:
PARAMETRI I GRUPPO |
pH, colore, materiali
totali in sospensione, temperatura, conduttività, odore, nitrati,
cloruri, fosfati, COD, DO (ossigeno disciolto), BOD5,
ammoniaca |
PARAMETRI II GRUPPO |
ferro disciolto, manganese,
rame, zinco, solfati, tensioattivi, fenoli, azoto Kjeldhal, coliformi totali
e coliformi fecali. |
PARAMETRI III GRUPPO |
fluoruri, boro, arsenico,
cadmio, cromo totale, piombo, selenio, mercurio, bario, cianuro, idrocarburi
disciolti o emulsioni, idrocarburi policiclici aromatici, antiparassitari
totali, sostanze estraibili con cloroformio, streptococchi fecali e salmonelle |
(**) Per i parametri facenti parte del III gruppo, salvoche per
quanto riguarda gli indicatori di inquinamento microbiologogico, su indicazione
dell'autorità competente al controllo ove sia dimostrato che non
vi sono antropiche, o natuarli, che possano determinarne la loro presenza
nelle acque, la frequenza di campionamentopuò essere ridotta. |
3) MODALITA' DI
PRELIEVO, DI CONSERVAZIONE E DI TRASPORTO
DEI CAMPIONI
I campioni dovranno
essere prelevati, conservati e trasportati in modo da
evitare alterazioni che possono influenzare significativamente
i risultati delle analisi.
a) Per il prelievo,
la conservazione ed il trasporto dei campioni per analisi dei parametri
di cui alla tabella 2/A, vale
quanto prescritto, per i singoli parametri, alla colonna G.
b) Per il prelievo,
la conservazione ed il trasporto dei campioni per analisi dei parametri
di cui alla tabella 3/A, vale quanto segue:
-
i prelievi saranno effettuati
in contenitori sterili;
-
qualora si abbia
motivo di ritenere che l'acqua in esame contenga cloro residuo, le bottiglie
dovranno contenere una soluzione al 10% di sodio tiosolfato, nella
quantita' di mL 0,1 per ogni 100 mL, di capacita' della bottiglia, aggiunto
prima della sterilizzazione;
-
le bottiglie di prelievo
dovranno avere una capacita' idonea a prelevare l'acqua necessaria all'esecuzione
delle analisi microbiologiche;
-
i campioni prelevati, secondo
le usuali cautele di asepsi, dovranno essere trasportati in
idonei contenitori frigoriferi (4-10oC) al riparo della luce e dovranno,
nel piu' breve tempo possibile, e comunque entro e
non oltre le 24 ore dal prelievo,
essere sottoposti ad esame.
Tabella 1/A: Caratteristiche
di qualità per acque superficiali destinate alla produzione di acqua
potabile
Num.
Progr. |
Parametro |
Unità
di misura |
|
|
|
|
|
|
1 |
pH |
unità
pH |
6,5-8,5 |
. |
5,5-9 |
- |
5,5-9 |
- |
2 |
Colore
(dopo filtrazione semplice) |
mg/L
scala pt |
10 |
20(o) |
50 |
100(o) |
50 |
200(o) |
3 |
Totale
materie in sospensione |
mg/L
MES |
25 |
- |
- |
- |
- |
- |
4 |
Temperatura |
°C |
22 |
25(o) |
22 |
25(o) |
22 |
25(o) |
5 |
Conduttività |
µS
/cm a 20° |
1000 |
- |
1000 |
- |
1000 |
- |
6 |
Odore |
Fattore
di diluizione a 25°C |
3 |
- |
10 |
- |
20 |
- |
7* |
Nitrati |
mg/L
NO3 |
25 |
50(o) |
- |
50(o) |
- |
50(o) |
8 |
Fluoruri
(1) |
mg/L
F |
0,7/l |
1,5 |
0,7/1,7 |
- |
0,7/1,7 |
- |
9 |
Cloro
organico totale estraibile |
mg/L
Cl |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
10* |
Ferro
disciolto |
mg/L
Fe |
0,1 |
0,3 |
1 |
2 |
1 |
- |
11* |
Manganese |
mg/L
Mn |
0,05 |
- |
0,1 |
- |
1 |
- |
12 |
Rame |
mg/L
Cu |
0,02 |
0,05(o) |
0,05 |
- |
1 |
- |
13 |
Zinco |
mg/L
Zn |
0,5 |
3 |
1 |
5 |
1 |
5 |
14 |
Boro |
mg/L
B |
1 |
- |
1 |
- |
1 |
- |
15 |
Berillio |
mg/L
Be |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
16 |
Cobalto |
mg/L
Co |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
17 |
Nichelio |
mg/L
Ni |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
18 |
Vanadio |
mg/L
V |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
19 |
Arsenico |
mg/L
As |
0,01 |
0,05 |
- |
0,05 |
0,05 |
0,1 |
20 |
Cadmio |
mg/L
Cd |
0,001 |
0,005 |
0,001 |
0,005 |
0,001 |
0,005 |
21 |
Cromo
totale |
mg/L
Cr |
- |
0,05 |
- |
0,05 |
- |
0,05 |
22 |
Piombo |
mg/L
Pb |
- |
0,05 |
- |
0,05 |
- |
0,05 |
23 |
Selenio |
mg/L
Se |
- |
0,01 |
- |
0,01 |
- |
0,01 |
24 |
Mercurio |
mg/L
Hg |
0,0005 |
0,001 |
0,0005 |
0,001 |
0,0005 |
0,001 |
25 |
Bario |
mg/L
Ba |
- |
0,1 |
- |
1 |
- |
1 |
26 |
Cianuro |
mg/L
CN |
- |
0,05 |
- |
0,05 |
- |
0,05 |
27 |
Solfati |
mg/L
SO4 |
150 |
250 |
150 |
250(o) |
150 |
250(o) |
28 |
Cloruri |
mg/L
Cl |
200 |
- |
200 |
- |
200 |
- |
29 |
Tensioattivi
(che reagiscono al blu di metilene) |
mg/L
(solfato di laurile) |
0,2 |
- |
0,2 |
- |
0,5 |
- |
30* |
Fosfati
(2) |
mg/L
P2O5 |
0,4 |
- |
0,7 |
- |
0,7 |
- |
31 |
Fenoli (indice fenoli) |
paranitroanilina, |
4 amminoantipirina |
|
mg/L
C6H5OH |
- |
0,001 |
0,001 |
0,005 |
0,01 |
0,1 |
32 |
Idrocarburi
disciolti o emulsionati (dopo estrazione mediante etere di petrolio) |
mg/L |
- |
0,05 |
- |
0,2 |
0,5 |
1 |
33 |
Idrocarburi
policiclici aromatici |
mg/L |
- |
0,0002 |
- |
0,0002 |
- |
0,001 |
34 |
Antiparassitari-totale
(parathion, HCH, dieldrine) |
mg/L |
- |
0,001 |
- |
0,0025 |
- |
0,005 |
35* |
Domanda
chimica ossigeno (COD) |
mg/L
O2 |
|
- |
- |
- |
30 |
- |
36* |
Tasso
di saturazione dell'ossigeno disciolto |
%
O2 |
>
70 |
- |
>
50 |
- |
>
30 |
- |
37* |
A
20°C senza nitrificazione domanda biochimica di ossigeno (BOD5) |
mg/L
O2 |
<
3 |
- |
<
5 |
- |
<
7 |
- |
38 |
Azoto
Kjeldahl (tranne NO2 ed NO3) |
mg/L
N |
1 |
- |
2 |
- |
3 |
- |
39 |
Ammoniaca |
mg/L
NH4 |
0,05 |
- |
1 |
1,5 |
2 |
4(o) |
40 |
Sostanze
estraibili al cloroformio |
mg/L
SEC |
0,1 |
- |
0,2 |
- |
0,5 |
- |
41 |
Carbonio
organico totale |
mg/L
C |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
42 |
Carbonio
organico residuo (dopo flocculazione e filtrazione su membrana da 5 µ)
TOC |
mg/L
C |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
43 |
Coliformi
totali |
/100
mL |
50 |
- |
5000 |
|
50000 |
|
44 |
Coliformi
fecali |
/100
mL |
20 |
- |
2000 |
- |
20000 |
- |
45 |
Streptococchi
fecali |
/100
mL |
20 |
- |
1000 |
- |
10000 |
- |
46 |
Salmonelle |
- |
assenza
in 5000 mL |
- |
assenza
in 1000 mL |
- |
- |
- |
Legenda: |
Categoria A1 – Trattamento fisico semplice e disinfezione |
Categoria A2 – Trattamento fisico e chimico normale e
disinfezione |
Categoria A3 – Trattamento fisico e chimico spinto, affinazione
e disinfezione |
I = Imperativo |
G = Guida |
(o) = sono possibili deroghe in conformità all’articolo
8 lettera b del presente decreto |
* = sono possibili deroghe in conformità all’articolo
8 lettera d del presente decreto |
Note: |
(1) I
valori indicati costituiscono i limiti superiori determinati in base alla
temperatura media annua (alta e bassa temperatura) |
(2) Tale
parametro è inserito per soddisfare le esigenze ecologiche di taluni
ambienti |
TESTO AL 1 AGOSTO 2000 ORE 19:15 |
SULLA BASE DELLA RIUNIONE DI COORDINAMENTO E CONCERTO
DEL 1 AGOSTO 2000 |
Tab. 2/A: metodi di misura
per la determinazione dei valori dei parametri chimici e chimico fisici
di cui alla tab. 1/A |
|
(A)
|
(B)
|
(C)
|
(D)
|
(E)
|
(F)
|
(G)
|
Num.
para= metro |
Parametro |
Unità
di misura |
Limite
di rilevamento |
Precisione
± |
Accuratezza
± |
Metodi
di misura (*) 1 |
a) materiale del contenitore
del campione; |
b) metodo di conservazione |
c) tempo massimo tra
il campionamento e l’analisi |
|
1 |
pH |
Unità
pH |
- |
0,1 |
0,2 |
Elettrometria. |
La misura va eseguita
preferibilmente sul posto al momento del campionamento. |
Il valore va sempre
riferito alla temperatura dell'acqua al momento del prelievo. |
|
a) polietilene o vetro; |
b) refrigerazione
a 4 °C |
c) 24 ore |
|
2 |
Colore
(dopo filtrazione semplice) |
mg/L
scala pt |
5 |
10
% |
20% |
Colorimetria. |
Metodo fotometrico
secondo gli standard della scala platino cobalto (previa filtrazione su
membrana di fibra di vetro). |
|
a) polietilene o vetro; |
b) refrigerazione
a 4 °C |
c) 24 ore |
|
3 |
Materiali
in sospensione totali |
mg/L |
- |
5
% |
10
% |
Gravimetria |
Filtrazione su membrana
da 0,45 µm, essiccazione a 105°C a peso costante. |
Centrifugazione (tempo
minimo 5 min, velocità media 2800/3000 giri-minuto) |
Filtrazione ed essiccazione
a 105°C a peso costante |
|
a) polietilene o vetro; |
b) refrigerazione
a 4 °C |
c) 24 ore |
|
4 |
Temperatura |
°C |
- |
0,5 |
1 |
Termometria. |
La misura deve essere
eseguita sul posto, al momento del campionamento |
|
- |
5 |
Conduttività |
µS
/ cm a 20° C |
- |
5
% |
10
% |
Elettrometria. |
a) vetro o polietilene; |
c) 1-3 giorni (**) |
|
6 |
Odore |
Fattore
di diluizione a 25°C |
- |
- |
- |
Tecnica
delle diluizioni successive, |
a) vetro; |
b) refrigerazione
a 4 °C; |
c) 6-24 ore. (**) |
|
7 |
Nitrati |
mg/LNO3 |
2 |
10
% |
20
% |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare. |
a) polietilene o vetro. |
b) refrigerazione
a 4 °C; |
c) 1-3 giorni (**) |
|
8 |
Fluoruri |
mg/L
F |
0.05 |
10
% |
20
% |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare previa distillazione se necessaria. |
Elettrometria |
Elettrodi ionici specifici |
|
a) polietilene. |
c) 7 giorni |
|
9 |
Cloro
organico totale estraibile |
mg/L
Cl |
pm
(***) |
pm |
pm |
pm |
pm |
10 |
Ferro
disciolto |
mg/L
Fe |
0,02 |
10
% |
20
% |
Spettrometria di assorbimento
atomico. Previa filtrazione su membrana da 0,45 µm, |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare, previa filtrazione su membrana da 0,45 µm, |
|
a) polietilene o vetro; |
b) campione ben chiuso
e refrigerazione a 4 °C. |
c) 24 ore |
|
11 |
Manganese |
mg/L
Mn |
|
|
|
Spettrometria di assorbimento
atomico. |
. |
Spettrometria di assorbimento
atomico. |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare. |
|
a) polietilene o vetro; |
b) acidificare a pH
< 2 (preferibilmente con HNO3 concentrato). |
|
12 |
Rame
(9) |
mg/L
Cu |
|
|
|
Spettrometria di assorbimento
atomico |
Polarografia |
. |
Spettrometria di assorbimento
atomico |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare. |
Polarografia |
|
come
specificato al parametro n.11 |
13 |
Zinco
(9) |
mg/L
Zn |
|
|
|
Spettrometria di assorbimento
atomico. |
Spettrometria di assorbimento
atomico. |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare. |
|
come
specificato al parametro n.11 |
14 |
Boro
(9) |
mg/L
B |
0,1 |
10
% |
20
% |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare. |
Spettrometria di assorbimento
atomico. |
|
a) polietilene; |
b) acidificare a pH
< 2 (preferibilmente con HN03 diluito 1:1). |
|
15 |
Berillio |
mg/L
Be |
pm |
pm |
pm |
pm |
come
specificato al parametro n.11 |
16 |
Cobalto |
mg/L
Co |
pm |
pm |
pm |
pm |
come
specificato al parametro n.11 |
17 |
Nichelio |
mg/L
Ni |
pm |
pm |
pm |
pm |
come
specificato al parametro n.11 |
18 |
Vanadio |
mg/L
V |
pm |
pm |
pm |
pm |
come
specificato al parametro n.11 |
19 |
Arsenico
(9) |
mg/L
As |
|
|
|
Spettrometria di assorbimento
atomico. |
Spettrometria di assorbimento
atomico. |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare. |
|
come
specificato al parametro n.11 |
20 |
Cadmio
(9) |
mg/L
Cd |
|
30
% |
30
% |
Spettrometria
di assorbimento atomico. |
Polarografia. |
|
come
specificato al parametro n.11 |
21 |
Cromo
totale (9) |
mg/L
Cr |
0,01 |
20
% |
30
% |
Spettrometria di assorbimento
atomico. |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare. |
|
come
specificato al parametro n.11 |
22 |
Piombo
(9) |
mg/L
Pb |
0,01 |
20
% |
30
% |
Spettrometria di assorbimento
atomico. |
Polarografia. |
|
come
specificato al parametro n.11 |
23 |
Selenio
(9) |
mg/L
Se |
0,005 |
- |
- |
Spettrometria
di assorbimento atomico. |
come
specificato al parametro n.11 |
24 |
Mercurio
(9) |
mg/L
Hg |
|
30
% |
30
% |
Spettrometria
di assorbimento atomico senza fiamma (su vapori freddi). |
a) polietilene o vetro; |
b) per ogni litro
di campione addizionare 5 mL di HNO3 concentrato e 10 mL di soluzione di
KMnO4 al 5%. |
c) 7 giorni |
|
25 |
Bario
(9) |
mg/L
Ba |
0,02 |
15
% |
30
% |
Spettrometria
di assorbimento atomico. |
come
specificato al parametro n.11 |
26 |
Cianuro |
mg/L
CN |
0,01 |
20
% |
30
% |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare. |
a) polietilene o vetro; |
b) addizionare NaOH
in gocce o in soluzione concentrata (pH circa 12) e raffreddare a 4 °C |
c) 24 ore. |
|
27 |
Solfati |
mg/LSO4 |
10 |
10
% |
10
% |
Gravimetria |
Complessometria con
EDTA |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare |
|
a) polietilene o vetro; |
b) refrigerazione
a 4 °C |
c) 7 giorni. |
|
28 |
Cloruri |
mg/L
Cl |
10 |
10
% |
10
% |
Determinazione volumetrica
(metodo di Mohr). |
Metodo mercurimetrico
con indicatore. |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare. |
|
a) polietilene o vetro; |
b) refrigerazione
a 4 °C |
c) 7 giorni. |
|
29 |
Tensioattivi |
mg/LMBAS |
0,05 |
20
% |
- |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare.
|
a) vetro o polietilene; |
b) refrigerazione
a 4 °C; |
c) 24 ore. |
|
30 |
Fosfati |
mg/L
P2O5 |
0,02 |
10
% |
20
% |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare. |
a) vetro; |
b) acidificazione
con H2SO4 a pH <2 24 ore. |
|
31 |
Fenoli |
mg/LC6H5OH
(indice fenoli) |
|
|
|
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare. Metodo alla 4-ammino-antipirina; |
Metodo alla p-nitro-anilina. |
|
a) vetro; |
b) acidificazione
con H3PO4 a pH <4 ed aggiunta di CuSO4
5 H2O (1g/L) |
c) 24 ore. |
|
32 |
Idrocarburi
disciolti o emulsionati |
mg/L |
|
20
% |
30
% |
Spettrofotometria
all'infrarosso previa estrazione con tetracloruro di carbonio. |
Gravimetria previa
estrazione mediante etere di petrolio. |
|
a) vetro; |
b) acidificare a pH
< 2 (H2SO4 o HCl); |
c) 24 ore. |
|
33 |
Idrocarburi
policiclici aromatici (9) |
mg/L |
0,00004 |
50
% |
50
% |
Misura della fluorescenza
in UV previa cromatografia su strato sottile. |
Misura comparativa
rispetto ad un miscuglio di 6 sostanze standard aventi la stessa concentrazione
(7). |
|
a) vetro scuro od
alluminio; |
b) tenere al buio
a 4°C |
c) 24 ore. |
|
34 |
Antiparassitari-totale
[parathion, esaclorocicloesano (HCH) dieldrine] (9) |
mg/L |
0,0001 |
50
% |
50
% |
Cromatografia in fase
gassosa o liquida previa estrazione mediante solventi adeguati e purificazione. |
Identificazione dei
componenti del miscuglio e determinazione quantitativa. (8) |
|
a) vetro; |
b) per HCH e dieldrin
acidificare con HCl concentrato (1 mL per litro di campione) e refrigerare
a 4°C; per parathion acidificare a pH 5 con H2SO4
(1:1) e refrigerare a 4 °C. |
c) 7 giorni |
|
35 |
Domanda
chimica ossigeno (COD) |
mg/L
O2 |
15 |
20
% |
20
% |
Metodo
al bicromato di potassio (ebollizione 2 ore) |
a) vetro; |
b) acidificare a pH
<2 con H2SO4 1-7 giorni (**) |
|
36 |
Tasso
di saturazione dell'ossigeno disciolto |
%
O2 |
5 |
10
% |
10
% |
Metodo di Winkler. |
Metodo di elettrochimico
(determinazione in situ) |
|
a) vetro; |
c) fissare l’ossigeno
sul posto con solfato manganoso e ioduro-sodio-azide; |
1 – 5 giorni a 4°C
(**) |
|
37 |
Domanda
biochimica di ossigeno (BOD5) a 20°C senza nitrificazione |
mg/L
O2 |
2 |
1,5 |
2 |
Determinazione
dell’O2 disciolto prima e dopo incubazione di 5 giorni (20 ±1°C)
al buio. Aggiunta di un inibitore di nitrificazione (preferibilmente alliltiourea) |
a) vetro; |
b) refrigerazione
a 4 °C; |
c) 4-24 ore |
|
38 |
Azoto
Kieldahl (escluso azoto di NO2 ed NO3) |
mg/L
N |
0,5 |
0,5 |
0,5 |
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare e determinazione volumetrica previa mineralizzazione
e distillazione secondo il metodo Kjeldahl. |
a) vetro; |
b) acidificare con
H2SO4 fino a pH <2; c) refrigerare a 4°C |
|
39 |
Ammoniaca |
mg/L
NH4 |
|
|
|
Spettrofotometria
di assorbimento molecolare |
come
specificato al parametro n.38 |
40 |
Sostanze
estraibili con cloroformio |
mg/L |
- |
- |
- |
Gravimetria |
Estrazione a pH neutro
mediante cloroformio distillato di fresco, evaporazione sotto vuoto moderato
a temperatura ambiente e pesata del residuo |
|
a) vetro; |
b) refrigerazione
a 4 °C; |
c) 24 ore |
|
41 |
Carbonio
organico totale (TOC) |
mg/L
C |
pm |
pm |
pm |
pm |
pm |
42 |
Carbonio
organico residuo (dopo flocculazione e filtrazione su membrana da 5 µm) |
|
pm |
|
pm |
pm |
pm |
(*) Possono adottarsi metodi di misura diversi, purché
i limiti di rilevamento, la precisione e l’accuratezza siano compatibili
con quelli indicati per i metodi riportati per ciascun parametro nel presente
allegato. In tal caso deve indicarsi il metodo adottato. |
(**) Il tempo massimo dipende dal tipo di campione. |
(***) Per memoria. |
(1) I campioni di acqua superficiali prelevati nel luogo
di estrazione vengono analizzati e misurati previa eliminazione, mediante
filtrazione semplice (vaglio a rete), dei residui galleggianti come legno,
plastica. |
(2) Per le acque della categoria A1 valore G |
(3) Per le acque delle categorie A2, A3 |
(4) Per le acque della categoria A3 |
(5) Per le acque delle categorie A1, A2, A3, valore I |
(6) Per le acque delle categorie A2, valore I ed A3 |
(7) Miscuglio di sei sostanze standard aventi la stessa
concentrazione da prendere in considerazione: fluorantrene, benzo-3, 4,
fluorantrene, benzo-11, 12 fluorantrene, benzo 3, 4 pirene, benzo 1, 12
perilene, indeno (1, 2, 3-cd) pirene. |
(8) Miscuglio di tre sostanze aventi la stessa concentrazione
da prendere in considerazione: parathion, esaclorocicloesano, dieldrin |
(9) Se il tenore di materie in sospensione dei campioni
è
elevato al punto da rendere necessario un trattamento preliminare speciale
di tali campioni, i valori dell’accuratezza riportati nella colonna E del
presente allegato potranno eccezionalmente essere superati e costituiranno
un obiettivo. Questi campioni dovranno essere trattati in maniera tale
che l’analisi copra la quantità maggiore delle sostanze da misurare. |
TESTO AL 1 AGOSTO 2000 ORE 19:15 |
SULLA BASE DELLA RIUNIONE DI COORDINAMENTO E CONCERTO
DEL 1 AGOSTO 2000 |
Tab. 3/A: Metodi di misura
per la determinazione dei valori dei parametri microbiologici di cui alla
tab. 1/A |
Num.
Parametro |
Parametro |
Metodi
di misura (*) |
1 |
Coliformi
totali 100 mL |
(A) Metodo MPN |
Seminare aliquote
decimali del campione (e/o sue diluizioni) in più serie di 5 tubi
(almeno tre serie) di Brodo Lattosato. Incubare a 36 ±1°C per
24 + 24 ore. I tubi positivi (presenza di gas) debbono essere sottoposti
a conferma in Brodo Lattosio Bile Verde Brillante a 36 ±1°C.
Sulla base della positività su tale terreno riportare il valore
come MPN/100 mL di campione. |
(B) Metodo MF |
Filtrare mL 100 di
campione e/o sue diluizioni attraverso membrana filtrante. Incubare su
m-Endo-Agar per 24 ore a 36 ±1°C. Contare le colonie rosse.
Riportare il valore a 100 mL di campione. |
|
2 |
Coliformi
fecali 100 mL |
(A) Metodo MPN |
I tubi positivi in
Brodo Lattosato di cui al numero 1 lettera (A) debbono essere sottoposti
a conferma in tubi di EC-Broth per 24 ore a 44±0,2°C in bagnomaria.
Sulla base della positività dei tubi di EC-Broth riportare il valore
come MPN/100 mL. |
(B) Metodo MF |
Filtrare mL 100 di
campione e/o sue diluizioni attraverso membrana filtrante come al numero
1 lettera (B). Incubare su m-FC-Agar a 44±0,2°C per 24 ore in
bagnomaria. Contare le colonie blu. Riportare il valore a 100 mL di campione. |
|
3 |
Streptococchi
fecali |
(A) Metodo MPN |
Seminare aliquote
decimali del campione (e/o sue diluizioni) in più serie di 5 tubi
(almeno tre) di Azide Dextrose Broth. Incubare a 36 ±1°C per
24 + 24 ore. I tubi positivi (torbidi) debbono essere sottoposti a conferma
in Ethyl Violet Azide Broth per 48 ore a 36 ±1°C . Leggere i
tubi positivi (torbidi con fondo porpora). Riportare il valore come MPN/100
mL di campione. |
(B) Metodo MF |
Filtrare mL 100 di
campione (e/o sue diluizioni) attraverso membrana filtrante come al numero
1, lettera (B). Incubare su KF-Agar a 36 ±1°C per 48 ore. Leggere
le colonie rosse. Riportare il valore a 100 mL di campione. |
|
4 |
Salmonelle
(1) |
Metodo MF |
Filtrare 1000 e 5000
mL di campione attraverso membrana filtrante. Se la torbidità non
consente di filtrare la quantità richiesta di campione, utilizzare
idoneo prefiltro. Incubare il filtro (e l’eventuale prefiltro) in acqua
peptonata a temperatura ambiente per 6 ore. |
Passare nei seguenti
terreni: |
a) Terreno di MULLER-KAUFFMAN
(incubare a 42°C per 24-48 ore); |
b) Terreno di Brodo
Selenite (incubare a 36°C per 24-48 ore); |
Dai predetti terreni
ed alle scadenze temporali indicate eseguire semine isolanti sui seguenti
terreni: |
SS-Agar (incubare
a 36°C per 24 ore); |
Hektoen Enteric Agar
(incubare a 36°C per 24 ore) |
d) Desossicolato Citrato
Agar (incubare a 36° per 24 ore). |
Le colonie sospette
devono essere sottoposte ad identificazione. |
|
(*) Per
i parametri dal n.1 al n.3 è facoltativa la scelta tra i metodi
di analisi MPN ed MF specificando il metodo impiegato. |
Assenza
in 5000 mL (A1, G) e assenza in 1000 mL (A2, G). |
SEZIONE B: CRITERI GENERALI
E METODOLOGIE PER IL RILEVAMENTO DELLE CARATTERISTICHE QUALITATIVE,
PER LA CLASSIFICAZIONE ED IL CALCOLO DELLA CONFORMITA' DELLE ACQUE DOLCI
SUPERFICIALI IDONEE ALLA VITA DEI PESCI SALMONICOLI E CIPRINICOLI.
I seguenti criteri si applicano
alle acque dolci superficiali designate quali richiedenti protezione
o miglioramento per essere idonee alla vita dei pesci.
1) CALCOLO DELLA CONFORMITA'
Le acque designate e classificate
si considerano idonee alla vita dei pesci quando i relativi campioni
prelevati con la frequenza minima riportata nella Tab. 1/B,
nello stesso punto di prelevamento e per un periodo
di dodici mesi, presentino valori dei parametri
di qualita' conformi ai limiti imperativi indicati e alle relative note
esplicative della medesima Tabella, per quanto riguarda:
a) il valore del 95% dei
campioni prelevati, per i parametri:
-
pH
-
BOD5
-
ammoniaca indissociata
-
ammoniaca totale
-
nitriti
-
cloro residuo totale zinco totale
-
rame disciolto.
Quando la frequenza
di campionamento e' inferiore ad un prelievo al mese, i valori
devono essere conformi ai limiti tabellari nel 100% dei campioni prelevati);
b) i valori indicati nella
tabella 1/B per i parametri:
-
temperatura
-
ossigeno disciolto;
c) la concentrazione media fissata
per il parametro:
Il superamento dei
valori tabellari o il mancato rispetto delle
osservazioni riportate nella tabella
1/B non sono presi in considerazione se
avvengono a causa di piene, alluvioni o altre calamita' naturali.
2) CAMPIONAMENTO
Ai fini dell'accertamento
della conformita' di cui al punto 1:
a) la frequenza
dei campionamenti stabilita nella tabella 1/B puo' essere ridotta
ove risulti accertato che la qualita' delle acque e' sensibilmente
migliore di quella riscontrabile, per
i singoli parametri dall'applicazione delle percentuali di cui al punto
I.
b) possono essere
esentate dal campionamento periodico le acque per le quali risulti accertato
che non esistono cause di inquinamento o rischio di deterioramento.
Il luogo esatto del prelevamento
dei campioni, la sua distanza dal piu' vicino punto di scarico di sostanze
inquinanti e la profondita' alla quale i campioni devono essere
prelevati sono definiti dall'autorita' competente in funzione, soprattutto,
delle condizioni ambientali locali.
Tab.1/B - Qualità delle
acque idonee alla vita dei pesci salmonidi e ciprinidi
N.
progr. |
Parametro |
Unità
di misura |
Acque per salmonidi
|
Acque per ciprinidi
|
Metodo
di analisi e rilevamento |
Frequenza
minima di campionamento e di misura |
Riferimento
in note esplicative |
G
|
I
|
G
|
I
|
|
|
1 |
Temperatura (aumento) |
Temperatura (massima) |
Temperatura (periodi
di riproduzione) |
|
|
|
|
|
|
-
Termometria |
Settimanale |
(1) |
2 |
Ossigeno |
mg/L
O2 |
|
>9(50%) |
|
>7(50%) |
- Volumetria (metodo
di Winkler) |
-Elettrometria (elettrodi
specifici) |
|
Mensile |
(2) |
3 |
Concentrazione
di ioni idrogeno |
pH |
6
–9 (o) |
|
6
–9 (o) |
|
-
Potenziometria |
Mensile |
(3) |
4 |
Materiali
in sospensione |
mg/L |
25
(o) |
60
(o) |
25
(o) |
80
(o) |
-
Gravimetria |
Mensile |
(4) |
5 |
BOD5 |
mg/L
O2 |
3 |
5 |
6 |
9 |
- Volumetria (metodo
di Winkler) |
- Elettrometria |
- Respirometria |
|
Mensile |
(5) |
6 |
Fosforo
totale |
mg/L
P |
0,07 |
|
0,14 |
|
-
Spettrofotometria di assorbimento molecolare (Metodo all'acidofosfomolibdic
o in presenza di acido ascorbico, previa mineralizzazione) |
Mensile |
(6) |
7 |
Nitriti |
mg/LNO2 |
0,01 |
0,88 |
0,03 |
1,77 |
-
Spettrofotometria di assorbimento molecolare (Metodo alla N-1-naftiletilen-diammina
e sul fanilammide) |
Mensile |
(7) |
8 |
Composti
fenolici |
mg/LC6H5OH |
0,01 |
** |
0,01 |
** |
- Spettrofotometria
di assorbimento molecolare (Metodo alla 4-aminoantipirina o alla p-nitroanilina) |
- Esame gustativo |
|
Mensile |
(8) |
9 |
Idrocarburi
di origine petrolifera |
mg/L |
0,2 |
*** |
0,2 |
*** |
- Spettrometria IR
(previa estrazione con CCl4 o solvente equivalente) |
- Esame visivo |
- Esame gustativo |
|
Mensile |
(9) |
10 |
Ammoniaca
non ionizzata |
mg/L
NH3 |
0,005 |
0,025 |
0,005 |
0,025 |
-Spettrofotometria
di assorbimento molecolare (Metodo al blu di indofenolo – oppure – Metodo
di Nessler) |
Mensile |
(10) |
11 |
Ammoniaca
totale |
mg/L
NH4 |
0,04 |
1 |
0,2 |
1 |
-
Spettrofotometria di assorbimento molecolare (Metodo al blu di indofenolo
– oppure – Metodo di Nessler) |
Mensile |
(11) |
12 |
Cloro
residuo totale |
mg/L
come HOCl |
|
0,004 |
|
0,004 |
-
Spettrofotometria di assorbimento molecolare o volumetria (Metodo DPD:N,N-dietil-p-fenilendiammina) |
Mensile |
(12) |
13 |
Zinco
totale * |
µg/L
Zn |
|
300 |
|
400 |
-
Spettrometria di assorbimento atomico |
Mensile |
(14) |
14 |
Rame |
µg/L
Cu |
|
40 |
|
40 |
-
Spettrometria di assorbimento atomico |
Mensile |
(14) |
15 |
Tensioattivi
(anionici) |
mg/L
come MBAS |
0,2 |
|
0,2 |
|
-
Spettrofotometria di assorbimento molecolare (Metodo al blu di metilene) |
Mensile |
(13) |
16 |
Arsenico |
µg/L
As |
|
50 |
|
50 |
-
Spettrometria di assorbimento atomico |
Mensile |
(14) |
17 |
Cadmio
totale * |
µg/L
Cd |
0,2 |
2,5 |
0,2 |
2,5 |
-
Spettrometria di assorbimento atomico |
Mensile |
(14) |
18 |
Cromo |
µg/L
Cr |
|
20 |
|
100 |
-
Spettrometria di assorbimento atomico |
Mensile |
(14) |
19 |
Mercurio
totale * |
µg/L
Hg |
0,05 |
0,5 |
0,05 |
0,5 |
-
Spettrometria di assorbimento atomico (su vapori freddi) |
Mensile |
(14) |
20 |
Nichel |
µg/L
Ni |
|
75 |
|
75 |
-
Spettrometria di assorbimento atomico |
Mensile |
(14) |
21 |
Piombo |
µg/L
Pb |
|
10 |
|
50 |
-
Spettrometria di assorbimento atomico |
Mensile |
(14) |
ABBREVIAZIONI:
G = guida o indicativo; I = imperativo od obbligatorio. |
Note
: |
(o):
Conformemente all'art. 13 sono possibili deroghe; |
(*) Totale
= Disciolto più particolato; |
(**)
I composti fenolici non devono essere presenti in concentrazioni tali da
alterare il sapore dei pesci |
(***)
I prodotti di origine petrolifera non devono essere presenti in quantità
tali da: |
- produrre
alla superficie dell’acqua una pellicola visibile o da depositarsi in strati
sul letto dei corsi d’acqua o sul fondo dei laghi
|
- dare ai
pesci un sapore percettibile di idrocarburi
|
- provocare
effetti nocivi sui pesci
|
Osservazioni
di carattere generale: |
Occorre
rilevare che nel fissare i valori dei parametri si è partiti dal
presupposto che gli altri parametri, considerati ovvero non considerati
nella presente sezione, sono favorevoli. Ciò significa in particolare
che le concentrazioni di sostanze nocive diverse da quelle enumerate sono
molto deboli. Qualora due o più sostanze nocive siano presenti sotto
forma di miscuglio, è possibile che si manifestino, in maniera rilevante,
effetti additivi, sinergici o antagonistici. |
Metodiche
analitiche e di campionamento: |
Le metodiche
analitiche e di campionamento da impiegarsi nella determinazione dei parametri
sono quelle descritte nei volumi "Metodi analitici per le acque" pubblicati
dall'Istituto di Ricerca sulle Acque del C.N.R. (Roma), e successivi aggiornamenti. |
NOTE ESPLICATIVE AI PARAMETRI
DELLA TAB.1/B
(Integrano le prescrizioni
figuranti nel prospetto di detta Tabella)
(1) Per la verifica
del DT la
temperatura deve essere misurata a valle di un punto di scarico termico
al limite della zona di mescolamento; il valore riportato
in tabella si riferisce alla differenza tra la temperatura misurata
e la temperatura naturale.
Con riferimento alla
temperatura di riproduzione, non e' stato espresso alcun valore limite
in considerazione della variabilita' di temperatura ideale
di riproduzione dei pesci appartenenti ai Ciprinidi nelle acque italiane.
(2) a) Valore limite
"I" - acque per Salmonidi: quando la concentrazione
di ossigeno e' inferiore a 6 mg/L, le Autorita'
competenti devono intervenire applicando le disposizioni dell'art.
12. paragrafo 2; b) Valore limite "I" - acque per Ciprinidi: quando
la concentrazione di ossigeno e' inferiore a 4 mg/L. le Autorita' competenti
applicano le disposizioni dell'art 12, paragrafo 2;
- quando si verificano le
condizioni previste in (a) e (b) le Autorita' competenti devono provare
che dette situazioni non avranno conseguenze dannose allo sviluppo
equilibrato delle popolazioni ittiche:
- tra parentesi
viene indicata la percentuale delle misure in cui debbono essere
superati o eguagliati i valori tabellari (e.g. > 9 (50%) significa
che almeno nel 50% delle misure di controllo la cocentrazione di 9 mg/L
deve essere superata);
– campionamento: almeno un campione
deve essere rappresentativo delle condizioni di minima ossigenazione nel
corso dell'anno. Tuttavia se si sospettano variazioni giornaliere sensibili
dovranno essere prelevati almeno 2 campioni rappresentativi delle differenti
situazioni nel giorno del prelievo.
(3) Le variazioni artificiali
del pH, rispetto ai valori naturali medi del corpo idrico considerato,
possono superare di ± 0,5 unità-pH i valori estremi figuranti
nel prospetto della tabella 1/B (sia per le acque per Salmonidi che per
le acque per Ciprinidi) a condizione che tali variazioni non determinino
un aumento della nocività di altre sostanze presenti nell'acqua.
(4) Si può derogare
dai suddetti limiti nei corpi idrici, in particolari condizioni idrologiche,
in cui si verifichino arricchimenti naturali senza intervento antropico;
- i valori limite (G e I per le due
sottoclassi) sono concentrazioni medie e non si applicano alle materie
in sospensione aventi proprietà chimiche nocive. In quest'ultimo
caso le Autorità competenti prenderanno provvedimenti per ridurre
detto materiale, se individuata l'origine antropica;
- nell'analisi gravimetrica il residuo,
ottenuto dopo filtrazione su membrana di porosità 0,45 µm
o dopo centrifugazione (tempo 5 min ed accelerazione media di 2.800-3.200
g), dovrà essere essiccato a 105 °C fino a peso costante.
(5) La determinazione dell'ossigeno
va eseguita prima e dopo incubazione di cinque giorni, al buio completo,
a 20 °C (± 1 °C) e senza impedire la nitrificazione.
(6) I valori limite "G" riportati
possono essere considerati come indicativi per ridurre l'eutrofizzazione;
- per i laghi aventi profondità
media compresa tra 18 e 300 metri, per il calcolo del carico di fosforo
totale accettabile, al fine di controllare l'eutrofizzazione, può
essere utilizzata la seguente formula:
|
Z
_____ |
L
= A |
—
(1 + v Tw ) |
|
Tw |
dove: |
L = carico annuale espresso in mg
di P per metro quadrato di superficie del lago considerato; |
Z = profondità media del
lago in metri (generalmente si calcola dividendo il volume per la superficie); |
Tw = tempo teorico di ricambio delle
acque del lago, in anni (si calcola dividendo il volume per la portata
annua totale dell'emissario); |
A = valore soglia per il contenimento
dei fenomeni eutrofici – Per la maggior parte dei laghi italiani "A" può
essere considerato pari a 20. |
Tuttavia per ogni singolo ambiente
è possibile calcolare uno specifico valore soglia (A) mediante l'applicazione
di una delle seguenti equazioni. (Il valore ottenuto va aumentato del 50%
per i laghi a vocazione salmonicola e del 100% per i laghi a vocazione
ciprinicola). |
Log [P] = 1,48 + 0,33 (±
0,09) Log MEI* alcal.
|
Log [P] = 0,75 + 0,27 (±
0,11) Log MEI* cond.
|
dove: |
P = A = Concentrazione di fosforo
totale di µg/L; |
MEI alcal. = Rapporto tra alcalinità
(meq/L) e profondità media (m); |
MEI cond. = Rapporto tra conducibilità
(µS /cm) e profondità media (m); |
(*) MEI = Indice morfoedafico. |
(7) Nei riguardi dei pesci i
nitriti risultano manifestamente più tossici in acque a scarso tenore
di cloruri. I valori "I" indicati nella tabella 1/B corrispondono ad un
criterio di qualità per acque con una concentrazione di cloruri
di 10 mg/L.
Per concentrazioni di cloruri comprese
tra 1 e 40 mg/L i valori limite "I" corrispondenti sono riportati nella
seguente tabella 2/B.
Tab. 2/B – Valori limite "Imperativi"
per il parametro nitriti per concentrazioni di cloruri comprese tra 1 e
40 mg/L
|
Acque per salmonidi |
(mg/L NO2) |
|
Acque per ciprinidi |
(mg/L NO2) |
|
1
|
0,10
|
0,19
|
5
|
0,49
|
0,98
|
10
|
0,88
|
1,77
|
20
|
1,18
|
2,37
|
40
|
1,48
|
2,96
|
(8) Data la complessità
della classe, anche se ristretta ai fenoli monoidrici, il valore limite
unico quotato nel prospetto della tabella 1/B può risultare a seconda
del composto chimico specifico troppo restrittivo o troppo permissivo;
- poiché la direttiva del
Consiglio (78/659/CEE del 18 luglio 1978) prevede soltanto l'esame organolettico
(sapore), appare utile richiamare nella tabella 3/B la concentrazione più
alta delle sostanze più rappresentative della sotto classe Clorofenoli
che non altera il sapore dei pesci (U.S. EPA – Ambient Water Quality Criteria,
1978):
Tab. 3/B
Fenoli |
|
Fenoli |
|
2-clorofenolo |
60 |
2,5-diclorofenolo |
23 |
4-clorofenolo |
45 |
2,6-diclorofenolo |
35 |
2,3-diclorofenolo |
84 |
2,4,6-triclorofenolo |
52 |
2,4-diclorofenolo |
0,4
(*) |
|
|
(*) Questo valore indica
che si possono riscontrare alterazioni del sapore dei pesci anche a concentrazione
di fenoli al disotto del valore guida (G) proposto.
Appare infine utile richiamare, nella
tabella 4/B, i criteri di qualità per la protezione della vita acquatica
formulati da B.C. Nicholson per conto del Governo Australiano in "Australian
Water Quality Criteria for Organic Compound – Tecnical Paper n. 82 (1984)"
Tab. 4/B
Fenoli |
µg/L |
Fenoli |
µg/L |
Fenolo |
100 |
4-clorofenolo |
400 |
o-cresolo |
100 |
2,4-diclorofenolo |
30 |
m-cresolo |
100 |
2,4,6-triclorofenolo |
30 |
p- cresolo |
100 |
Pentaclorofenolo |
1 |
(9) Considerato che gli olii
minerali (o idrocarburi di origine petrolifera) possono essere presenti
nell'acqua o adsorbiti nel materiale in sospensione o emulsionati o disciolti,
appare indispensabile che il campionamento venga fatto sotto la superficie:-
concentrazioni di idrocarburi anche inferiori al valore guida riportato
nella tabella 1/B possono tuttavia risultare nocivi per forme ittiche giovanili
ed alterare il sapore del pesce;
- la determinazione degli idrocarburi
di origine petrolifera va eseguita mediante spettrofotometria IR previa
estrazione con tetracloruro di carbonio o altro solvente equivalente.
(10) La proporzione di ammoniaca
non ionizzata (o ammoniaca libera), specie estremamente tossica, in quella
totale (NH3+NH4+)
dipende dalla temperatura e dal pH;
- le concentrazioni di ammoniaca
totale (NH3 + NH4+)
che contengono una concentrazione di 0,025 mg/L di ammoniaca non ionizzata,
in funzione della temperatura e pH, misurate al momento del prelievo, sono
quelle riportate nella seguente tabella 5/B:
Tab. 5/B
Temperatura
(°C ) |
Valori di pH
|
6,5 |
7,0 |
7,5 |
8,0 |
8,5 |
9,0 |
9,5 |
5 |
63,3 |
20,0 |
6,3 |
2,0 |
0,66 |
0,23 |
0,089 |
10 |
42,4 |
13,4 |
4,3 |
1,4 |
0,45 |
0,16 |
0,067 |
15 |
28,9 |
9,2 |
2,9 |
0,94 |
0,31 |
0,12 |
0,053 |
20 |
20,0 |
6,3 |
2,0 |
0,66 |
0,22 |
0,088 |
0,045 |
25 |
13,9 |
4,4 |
1,4 |
0,46 |
0,16 |
0,069 |
0,038 |
30 |
9,8 |
3,1 |
1,0 |
0,36 |
0,12 |
0,056 |
0,035 |
(11) Al fine di ridurre
il rischio di tossicita' dovuto alla presenza di ammoniaca non ionizzata,
il rischio di consumo di ossigeno dovuto alla nitrificazione
e il rischio dovuto all'instaurarsi di fenomeni di eutrofizzazione, le
concentrazioni di ammoniaca totale non dovrebbero superare i valori
"I" indicati nel prospetto della tabella 1/B;
- tuttavia per
cause naturali (particolari condizioni geografiche o climatiche)
e segnatamente in caso di basse temperature dell'acqua e di diminuzione
della nitrificazione o qualora l'Autorita'competente possa
provare che non si avranno conseguenze dannose per lo sviluppo equilibrato
delle popolazioni ittiche, e' consentito il superamento dei valori tabellari.
(12) Quando il cloro
e' presente in acqua in forma disponibile, cioe' in grado di
agire come ossidante, i termini, usati indifferentemente in letteratura,
"disponibile", "attivo", o "residuo" si equivalgono;
- il "cloro residuo
totale" corrisponde alla somma, se presenti contemporaneamente,
del cloro disponibile libero [cioe' quello
presente come una miscela in equilibrio di ioni ipoclorito (OC1-) ed
acido ipocloroso (HOCl)] e del cloro combinato disponibile
[cioe' quello presente nelle cloroammine o in altri composti
con legami N-Cl (i.e. dicloroisocianurato di sodio)]:
- la concentrazione
piu' elevata di cloro (Cl2) che non manifesta effetti
avversi su specie ittiche sensibili, entro 5 giorni, e' di 0,005
mg C12/L (corrispondente a 0.004 mg/L di HOCl). Considerato
che il cloro e' troppo reattivo per persistere a lungo nei corsi d'acqua,
che lo stesso acido ipocloroso si decompone lentamente a ione
cloruro ed ossigeno (processo accelerato dalla luce solare), che
i pesci per comportamento autoprotettivo fuggono dalle zone ad elevata
concentrazione di cloro attivo, come valore e' stato
confermato il limite suddetto;
- le quantita'
di cloro totale, espresse in mg/L di Cl2,
che contengono una concentrazione di 0,004 mg/L di HOCl,
variano in funzione della temperatura e soprattutto del
valore di pH (in quanto influenza in maniera rimarchevole il grado di dissociazione
dell'acido ipocloroso HOCl «H+
+ ClO-) secondo la seguente tabella 6/B:
Tab. 6/B
Temperatura
(°C ) |
Valori di pH
|
6 |
7 |
8 |
9 |
5 |
0,004 |
0,005 |
0,011 |
0,075 |
25 |
0,004 |
0,005 |
0,016 |
0,121 |
Pertanto i valori "I" risultanti
in tabella corrispondono a pH = 6. In presenza di valori di pH piu'
alti sono consentite concentrazioni di cloro residuo totale (Cl2)
piu' elevate e comunque non superiori a quelle riportate in tabella, 6/B;
- per i calcoli analitici
di trasformazione del cloro ad acido ipocloroso ricordare che, dall'equazione
stechiometrica, risulta che una mole di cloro (Cl2) corrisponde
ad 1 mole di acido ipocloroso (HOCl).
- in ogni caso la concentrazione
ammissibile di cloro residuo totale non deve superare il limite di rilevabilita'
strumentale del metodo di riferimento.
(13) L'attenzione
e' rivolta alla classe tensioattivi anionici, che trova il maggior impiego
nei detersivi per uso domestico;
- il metodo al blu
di metilene, con tutti gli accorgimenti suggeriti negli ultimi
anni (vedi direttiva del Consiglio 82/243/CEE del 31 marzo
1982, in Gazzetta Ufficiale delle Comunita' europee L. 109
del 22 aprile 1982), appare ancora
il piu' valido per la determinazione di
questa classe di composti. Per il futuro e' da prevedere l'inclusione
in questo parametro almeno della classe dei tensioattivi non ionici.
(14) Gli
otto metalli presi in considerazione risultano piu' o meno tossici verso
la fauna acquatica. Alcuni di essi (Hg, As, etc.) hanno la capacita' di
bioaccumularsi anche su pesci commestibili.
La tossicita' e' spesso attenuata
dalla durezza. I valori quotati nel prospetto della tabella 1/B, corrispondono
ad una durezza dell'acqua di 100 mg/L come CaCO3. Per
durezze comprese tra <50 e >250 i valori limite corrispondenti
sono riportati nei riquadri seguenti contraddistinti per protezione
dei Salmonidi e dei Ciprinidi.
Protezione Salmonidi
Parametri (*)
|
Durezza dell’acqua (mg/L di
CaCO3)
|
<50 |
50-99 |
100-149 |
150-199 |
200-250 |
>250 |
12 |
Arsenico |
come
As |
50 |
50 |
50 |
50 |
50 |
50 |
13 |
Cadmio
totale |
come
Cd |
2,5 |
2,5 |
2,5 |
2,5 |
2,5 |
2,5 |
14 |
Cromo |
come
Cr |
5 |
10 |
20 |
20 |
50 |
50 |
15 |
Mercurio
totale |
come
Hg |
0,5 |
0,5 |
0,5 |
0,5 |
0,5 |
0,5 |
16 |
Nichel |
come
Ni |
25 |
50 |
75 |
75 |
100 |
100 |
17 |
Piombo |
come
Pb |
4 |
10 |
10 |
20 |
20 |
20 |
18 |
Rame |
come
Cu |
5(a) |
22 |
40 |
40 |
40 |
112 |
19 |
Zinco
totale |
come
Zn |
30 |
200 |
300 |
300 |
300 |
500 |
(a) La presenza di pesci in acque
con più alte concentrazioni può significare che predominano
complessi organocuprici disciolti.
Protezione Ciprinidi
Parametri (*)
|
Durezza
dell’acqua ( mg/L di CaCO3) |
<50 |
50-99 |
100-149 |
150-199 |
200-250 |
>250 |
12 |
Arsenico |
come
As |
50 |
50 |
50 |
50 |
50 |
50 |
13 |
Cadmio
totale |
come
Cd |
2,5 |
2,5 |
2,5 |
2,5 |
2,5 |
2,5 |
14 |
Cromo |
come
Cr |
75 |
80 |
100 |
100 |
125 |
125 |
15 |
Mercurio
totale |
come
Hg |
0,5 |
0,5 |
0,5 |
0,5 |
0,5 |
0,5 |
16 |
Nichel |
come
Ni |
25 |
50 |
75 |
75 |
100 |
100 |
17 |
Piombo |
come
Pb |
50 |
125 |
125 |
250 |
250 |
250 |
18 |
Rame |
come
Cu |
5 |
22 |
40 |
40 |
40 |
112 |
19 |
Zinco
totale |
come
Zn |
150 |
350 |
400 |
500 |
500 |
1000 |
(*) I valori limite si riferiscono
al metallo disciolto, salvo diversa indicazione e sono espressi in µg/L.
SEZIONE C:
CRITERI GENERALI E METODOLOGIE PER IL RILEVAMENTO DELLE CARATTERISTICHE
QUALITATIVE ED IL CALCOLO DELLA CONFORMITA' DELLE
ACQUE DESTINATE ALLA VITA DEI MOLLUSCHI
I seguenti criteri
si applicano alle acque costiere e salmastre sedi di banchi
e popolazioni naturali di molluschi bivalvi e gasteropodi designate
come richiedenti protezione e miglioramento per consentire la vita
e lo sviluppo dei molluschi e per contribuire alla buona
qualita' dei prodotti della molluschicoltura destinati
al consumo umano.
1) CALCOLO DELLA CONFORMITA'
1. Le acque designate
ai sensi dell'art. 14 si considerano conformi quando i campioni di
tali acque, prelevate nello stesso punto per un periodo di dodici
mesi, secondo la frequenza minima prevista nella tab. 1/C, rispettano
i valori e le indicazioni di cui alla medesima tabella per quanto riguarda:
a) il 100%
dei campioni prelevati per i parametri sostanze organo alogenate
e metalli;
b) il 95% dei campioni per
i parametri salinita' ed ossigeno disciolto;
e) il 75% dei campioni per
gli altri parametri indicati nella tab. l/C.
2. Qualora la frequenza dei
campionamenti, ad eccezione di quelli relativi ai parametri sostanze organo
alogenate e metalli sia inferiore a quella indicata nella tab. 1/C,
la conformita' ai valori ed alle indicazioni deve essere rispettata nel
100% dei campioni.
3. Il superamento dei valori
tabellari o il mancato rispetto delle indicazioni riportate
nella tabella 1/C non sono presi in considerazione se
avvengono a causa di eventi calamitosi.
2) CAMPIONAMENTO
1. L'esatta ubicazione
delle stazioni di prelievo dei campioni, la loro distanza dal piu' vicino
punto di scarico di sostanze inquinanti e la profondita' alla quale
i campioni devono essere prelevati, sono definiti dall'Autorita'
competente in funzione delle condizioni
ambientali locali.
2. Ai fini dell'accertamento
della conformita' di cui al comma 1, la frequenza dei campionamenti
stabilita nella tabella 1/C puo' essere ridotta dall'Autorita' competente
ove risulti accertato che la qualita' delle acque e' sensibilmente superiore
per i singoli parametri di quella risultante dall'applicazione dei valori
limite e relative note.
3. Possono essere
esentate dal campionamento periodico le acque per le quali risulti
accertato che non esistano cause di inquinamento o rischio di deterioramento.
Tab.1/C Qualità
delle acque destinate alla vita dei molluschi
|
Parametro |
Unità
di misura |
G |
I |
Metodo
di analisi di riferimento |
Frequenza
minima dei campionamenti e delle misurazioni |
1 |
pH |
unità
pH |
|
7
– 9 |
- Elettrometria |
La misurazione viene
eseguita sul posto al momento del campionamento |
|
Trimestrale |
2 |
Temperatura |
°C |
La
differenza di temperatura provocata da uno scarico non deve superare, nelle
acque destinate alla vita dei molluschi influenzate da tale scarico, di
oltre 2 °C la temperatura misurata nelle acque non influenzate |
|
- Termometria |
La misurazione viene
eseguita sul posto al momento del campionamento |
|
Trimestrale |
3 |
Colorazione
(dopo filtrazione) |
mg
Pt/L |
|
Dopo
filtrazione il colore dell'acqua, provocato da uno scarico, non deve discostarsi
nelle acque destinate alla vita dei molluschi influenzate da tale scarico
di oltre 10 mg Pt/L dal colore misurato nelle acque non influenzate |
- Filtrazione su membrana
filtrante di 0,45µm. |
Metodo fotometrico,
secondo gli standard della scala platino-cobalto |
|
Trimestrale |
4 |
Materiali
in sospensione |
mg/L |
|
L'aumento
del tenore di materie in sospensione provocato da uno scarico non deve
superare, nelle acque destinate alla vita dei molluschi influenzate da
tale scarico, di oltre il 30% il tenore misurato nelle acque non influenzate |
- Filtrazione su membrana
filtrante di 0,45µm, essiccazione a 105° C e pesatura; |
- Centrifugazione
(tempo minimo 5 min. accelerazione media di 2800-3200 g) essiccazione a
105°C e pesatura. |
|
Trimestrale |
5 |
Salinità |
‰ |
12
– 38‰ |
- <40‰ |
- La variazione della
salinità provocata da uno scarico non deve superare, nelle acque
destinate alla vita dei molluschi influenzate da tale scarico, ±
10% la salinità misurata nelle acque non influenzate |
|
Conduttometria |
Mensile |
6 |
Ossigeno
disciolto |
%
di saturazione |
>80% |
- >70% (valore
medio) |
- Se una singola misurazione
indica un valore inferiore al 70% le misurazioni vengono proseguite |
- Una singola misurazione
può indicare un valore inferiore al 60% soltanto qualora non vi
siano conseguenze dannose per lo sviluppo delle popolazioni di molluschi |
|
-Metodo di Winkler |
-Metodo elettrochimico |
|
Mensile,
con almeno un campione rappre-sentativo del basso tenore di ossigeno presente
nel giorno del prelievo. Tuttavia se si presentano varia-zioni diurne si-gnificative
saranno effettuati almeno due prelievi al giorno. |
7 |
Idrocarburi
di origine petrolifera |
|
|
Gli idrocarburi non
devono essere presenti nell'acqua in quantità tale: |
- da produrre un film
visibile alla superficie dell'acqua e/o un deposito sui molluschi |
- da avere effetti
nocivi per i molluschi |
|
-
Esame visivo
|
Trimestrale |
8 |
Sostanze
organo-alogenate |
|
La
concentrazione di ogni sostanza nella polpa del mollusco deve essere tale
da contribuire ad una buona qualità dei prodotti della molluschicoltura |
La
concentrazione di ogni sostanza nell’acqua o nella polpa del mollusco non
deve superare un livello tale da provocare effetti nocivi per i molluschi
e per le loro larve. |
Cromatografia
in fase gassosa, previa estrazione mediante appropriati solventi e purificazione |
Semestrale |
9 |
Metalli: |
|
Argento |
Ag |
Arsenico |
As |
Cadmio |
Cd |
Cromo |
Cr |
Rame |
Cu |
Mercurio |
Hg(*) |
Nichelio |
Ni |
Piombo |
Pb(**) |
Zinco |
Zn |
|
|
La concentrazione di ogni sostanza nella
polpa del mollusco deve essere tale da contribuire ad una buona qualità
dei prodotti della molluschicoltura |
|
La concentrazione
di ogni sostanza nell’acqua o nella polpa del mollusco non deve superare
un livello tale da provocare effetti nocivi per i molluschi e per le loro
larve. |
E’necessario prendere
in considerazione gli effetti sinergici dei vari metalli. |
|
-Spettrofotometria
di assorbimento atomico, eventualmente preceduta da concentrazione e/o
estrazione |
Semestrale |
10 |
Coliformi
fecali |
n°/
100mL |
|
<300
nella polpa del mollusco e nel liquido intervalvare |
Metodo di diluizione
con fermentazione in substrati liquidi in almeno tre provette, in tre diluizioni.
Trapianto delle provette positive su terreno di conferma. |
Computo secondo il
sistema M.P.N. (Numero più probabile). Temperatura di incubazione
44 ± 0,5 °C |
|
Trimestrale |
11 |
Sostanze
che influiscono sul sapore dei molluschi |
|
|
Concentrazione
inferiore a quella che può alterare il sapore dei molluschi |
Esame
gustativo dei molluschi, allorché si presume la presenza di tali
sostanze |
|
12 |
Sassitossina
(prodotta dai dinoflagellati) |
|
|
|
|
|
(*) valore imperativo
nella polpa del mollusco = 0,5 ppm
(**) valore imperativo
nella polpa del mollusco = 2 ppm
______________________________
ABBREVIAZIONI:
G = guida o indicativo;
I = imperativo o obbligatorio
------------------------------------------------------------------------
Nota - L'allegato
è stato così sostituito dall'articolo 25 del D.lgs 18 agosto
2000, n. 258 " Disposizioni correttive e integrative del decreto legislativo
11 maggio 1999, n. 152, in materia di tutela delle acque dall'inquinamento,
a norma dell'articolo 1, comma 4, della legge 24 aprile 1998, n. 128".